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EP 1 694 829 B1
b) clonage et séquençage de l’ADNc complet (clone SRAS-S de 4 kb)
[0166]

L’ADNc S complet a été obtenu à partir des clones SARS-S1 et SARS-S2 précités, de la façon suivante :

1) une réaction d’amplification PCR a été réalisée sur un clone SARS-S2 en présence de l’amorce S/R4/-/
25348-25329 précitée et de l’amorce S/S/+/24696-24715: un amplicon de 633 pb a été obtenu,
2) une autre réaction d’amplification PCR a été réalisée sur un autre clone SARS-S2, en présence des amorces
S/F4/+/23322-23341 précitée et S/S/- /24803-24784: un amplicon de 1481 pb a été obtenu,
La réaction d’amplification a été réalisée dans les conditions telles que définies ci-dessus pour l’amplification des
fragments Sa et Sb, à l’exception que 30 cycles d’amplifications comprenant une étape de dénaturation à 94° C
pendant 20 sec et une étape d’élongation à 72° C pendant 2 min 30 sec ont été effectués.
3) les 2 amplicons (633 pb et 1481 pb) ont été purifiés dans les conditions telles que définies ci-dessus pour les
fragments Sa et Sb.
4) une autre réaction d’amplification PCR à l’aide des amorces S/F4/+/23322-23341 et S/R4/-/25348-25329 précitées, a été réalisée sur les amplicons purifiés obtenus en 3). La réaction d’amplification a été réalisée dans les
conditions telles que définies ci-dessus pour l’amplification des fragments Sa et Sb, à l’exception que 30 cycles
d’amplifications ont été effectués.
L’amplicon de 2026 pb ainsi obtenu a été purifié, cloné dans le vecteur PCR2.1-TOPO puis séquencé comme cidessus, à l’aide des amorces telles que définies ci-dessus pour les fragments Sa et Sb. Le clone ainsi obtenu a été
dénommé clone 3’.
5) Le clone SARS-S1 précédemment obtenu et le clone 3’ont été digérés par EcoR I, les bandes d’environ 2kb ainsi
obtenues ont été purifiées sur gel puis amplifiées par PCR avec les amorces S/F2/+/21406-21426 et S/R4/-/
25348-25329 précitées. La réaction d’amplification a été réalisée dans les conditions telles que définies ci-dessus
pour l’amplification des fragments Sa et Sb, à l’exception que 30 cycles d’amplifications ont été effectués. L’amplicon
d’environ 4 kb a été purifié et séquencé. Il a ensuite été cloné dans le vecteur PCR2.1-TOPO pour donner le
plasmide, dénommé SARS-S, et l’insert contenu dans ce plasmide a été séquencé comme ci-dessus, à l’aide des
amorces telles que définies ci-dessus pour les fragments Sa et Sb. Les séquences d’ADNc de l’insert et de l’amplicon
codant pour la protéine S, correspondent respectivement aux séquences SEQ ID NO : 4 et SEQ ID NO : 2 dans la
liste de séquences jointe en annexe, elles codent pour la protéine S (SEQ ID NO : 3).

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10

15

20

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30

[0167] La séquence de l’amplicon correspondant à l’ADNc codant pour la protéine S de la souche de SARS-CoV
issue du prélèvement n°031589 présente les deux mutations suivantes par rapport aux séquences correspondantes de
respectivement les isolats Tor2 et Urbani, les positions des mutations étant indiquées en référence à la séquence
complète du génome de l’isolat Tor2 (Genbank AY274119.3) :
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40

g/t en position 23220 ; le codon alanine (gct) en position 577 de la séquence en acides aminés de la protéine S de
Tor2 est remplacé par un codon sérine (tct),
c/t en position 24872 : cette mutation ne modifie pas la séquence en acides aminés de la protéine S, et

[0168] Le plasmide, dénommé SARS-S, a été déposé sous le n° I-3059, le 20 juin 2003, auprès de la Collection
Nationale de Cultures de Microorganismes, 25 rue du Docteur Roux, 75724 Paris Cedex 15 ; il contient la séquence
d’ADNc codant pour la protéine S de la souche de SARS-CoV issue du prélèvement répertorié sous le n° 031589,
laquelle séquence correspondant aux nucléotides des positions 21406 à 25348 (SEQ ID NO :4), en référence à la
séquence Genbank AY274119.3.

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2.2) ADNc codant pour les protéines M et E

50

[0169] Les ARN issus du prélèvement 031589, extraits comme ci-dessus, ont été soumis à une transcription inverse,
associée, lors de la même étape (kit Titan One Step RT-PCR®, Roche), à une réaction d’amplification par PCR, à l’aide
des couples d’amorces :
-

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S/E/F1/+/26051-26070 et S/E/Rl/-/26455-26436 pour amplifier l’ORF-E, et
S/M/F1/+/26225-26244 et S/M/Rl/-/27148-27129 pour amplifier l’ORF-M.

[0170] Un premier mélange réactionnel contenant : 8,6 Pl d’H2Oppi, 1 Pl de dNTP (5mM), 0,2 Pl de chacune des
amorces (50PM), 1,25 Pl de DTT (100mM) et 0,25 Pl de RNAsin (40UI/Pl) a été combiné avec un deuxième mélange
réactionnel contenant : 1 Pl d’ARN, 7 Pl d’H2Oppi, 5 Pl de tampon de RT-PCR 5X et 0,5 Pl de mélange d’enzyme et les
mélanges combinés ont été incubés dans un thermocycleur dans les conditions suivantes : 30 min à 42°C, 10 min à

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